吉林临床前动物实验细胞实验外包「英瀚斯」

小鼠xiao喘模型

造模方法

致敏：小鼠在清洁级实验动物房适应性饲养1周,于造模当天、第8天经腹腔无菌***抗原液0.2 ml

激发：第二周，每日上午8～10时将小鼠置于自制密闭雾化箱中，给予含10mg/ml卵清蛋白溶液超声雾化吸入(现配现用)，每日1次，每次30min以激发xiao喘，连续激发14-21 d。如运动能力及社会交往能力下降、探索行为能力下降、qin犯攻击能力缺陷、xing行为能力下降等。成功的模型表现：小鼠出现烦躁不安，进而呼吸加快、加深，静伏不动、弓背，严重者伸颈、缩胸、收缩呈喘xi状，甚至大小便失禁等。

造模照片

模型图片

动物实验的管理

在建设中要充分的、尽可能的直接体现管理规范，充分考虑人为原因或可能的人为失误、尽量避免人为出现可能因素的存在；在管理上要尽可能避免设施的不足或缺陷和可能出现的漏洞，使设施可能的规范管理或充分发挥设施潜在的可进行的规范管理。

一般是指为了***上的目的用动物进行的实验。因此，设计动物***模型的一个重要原则是，所的模型应尽可能近似于人类***的情况。此时，动物将作为***的代替者或模型来使用，而对构造上、机能上所表现的种间异同问题，应从比较生物学方面去了解。一般的条件要求是接近于人、容易管理和能够大量使用的，因此多用哺乳类的兔、大黑鼠、小白鼠、豚鼠、猫、狗、猴、田鼠等；

实验动物的给法

(一)***给药法

1. 皮射 ***时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持将针头刺入,固定后即可进行***。脑卒中模型大鼠方法:SD大鼠，雌雄不拘,体重为250?300g，经腹腔***水合氯醛（350?400mg/kg体重的剂或戊ba比妥钠(50?60mg/kg体重的剂量)ma醉后，仰卧位固定，剃除颈部毛发，***区域皮肤常规消毒。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部***；蛙可在脊背部淋巴囊***；狗多在大腿外侧***，拔针时，轻按片刻，防药液逸出。

2. 皮内*** 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。操作时要小心仔细、大胆敏捷、熟练准确、不能粗暴，不能恐吓动物，同时，要爱惜动物，使动物少受痛苦。 如将一定量的性同位素溶液、颜料或致炎物质、等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物***部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可***药液。***后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。

3. 肌肉*** 当给动物***不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的时,常采用肌肉***。肌肉***一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。

***时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可***。给大、小鼠作肌肉***时，选大腿外侧肌肉进行***。

4. 腹腔*** 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。

5. 静脉*** 是将药液直接***于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。

小鼠、大鼠的静脉***：常采用尾静脉***。如动物被毛较长，先要用剪刀将其剪短，再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除毛。鼠尾静脉共有3根， 左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈,***时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。

小鼠膀胱ai原位瘤动物模型建立方法

膀胱灌注法通常采用对数生长期的MB49小鼠膀胱ai细胞株作为实验材料，6-12周龄的雌性C57/BL6小鼠作为实验动物。B组在灌注后第7天始每隔3d处死3只解剖观察膀胱肿liu生长情况及有无转移,并取qi官***(膀胱、shen、输尿管。- -般膀胱内灌注数量为:10^4-5*10^5个，10^4-10^5个， .5x10^6-4x10^6个。实验中常通过导管对经过膜处理后膀胱灌入细胞悬液--定时间后使细胞粘附于膀胱壁上，建立起小鼠原位膀胱ai模型。该方法简便有效，成瘤率相对较高。但是在膀胱粘膜完整的情况下，发***率- -般只有10%。为提高其移植成功率，研究者通常采用膀胱粘膜损伤技术进行膀胱灌注。常用的膀胱损伤技术有电灼法，酸性溶液和胰蛋白酶灌注法(17-19)。该方法成瘤率高，具有很强的实用性，但是膀胱ai模型插管要求高，肿liu细胞容易外渗，并且膜损伤处理过后易发生膀胱内发炎现象。