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大鼠脑缺血再灌注模型

造模方法

大鼠麻***仰卧固定于恒温***台上。暴露颈总动脉颈（CCA），分离颈内动脉（ICA）和颈外动脉（ECA）。应特别注意对动物源性气溶胶的防护，例如对动物的剖检应在负压剖检台上进行。CCA近心端结扎并另备线，ICA远端放置微型动脉夹，在CCA靠近分叉处插入鱼线，即线栓由颈内动脉分叉处计长度为1.85±0.05cm，说明丝线头端己到达ICA分支MCA以和大脑前动脉（ACA）的分叉处，阻断了同侧ICA和经ACA来自对侧ICA的血供，缺血1h。

***造模图片

病理判定图片

阑尾炎动物模型

方法  成年大鼠，后固定，无菌条件下开腹，将阑尾及末端回肠和与阑尾系膜相连的肠段(下称临近肠段)移出腹腔并置壁上。剪开阑尾尖部的阑尾系膜，把阑尾尖部肠内容物挤至阑尾近端肠腔内，距尖部1cm处用1号丝线将阑尾管攀结扎。把结扎了的阑尾尖部摆放在回肠根部和临近肠段之间。用小圆针细丝线(000号)把回肠根部和临近肠段相应位置缝合一针(仅穿透浆肌层)，后将结扎阑尾包埋于其下。再顺续沿末端回肠由远端至近端与临近肠段相应位置紧密缝合1～2针，将阑尾全部包埋在缝合的肠段之下。实验动物的选择小鼠小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。将外置的全部肠段送入腹腔，两层缝合关腹，无菌纱布包扎伤口，送回笼中饲养观察。或成年家兔，后固定于***台架上，备皮消毒铺巾后，无菌条件下腹正中切口开腹6cm，寻及盲肠提出阑尾，于阑尾根部以4号丝线紧贴阑尾壁穿过系膜结扎阑尾，随后将阑尾纳回腹腔，逐层关腹。术后，在规定的时间点测定动物体温，行坏死阑尾炎腔内容物***培养，包囊或坏死阑尾大小的检测，以及肉眼病理观察和***形态学改变的镜检。

特点  大鼠术后15d，阑尾呈脓性坏死，外裹一层纤维性包囊，囊内含有大量的***，模型成功率高。兔术后6～12h，阑尾充血、增粗、水肿；12～24h时，阑尾肿胀、增粗更为明显，外被脓苔与周围肠管粘连，部分阑尾壁可见斑点状出血灶，腹腔内有脓性渗液出现。与阑尾脓苔粘连的周围肠管亦呈明显的水肿、充血，甚或有阑尾系膜形成。腹腔渗液***培养有大肠生长。不同动物对同一因素的反应虽然往往是相似的，但也常常会遇到动物出现特殊反应的情况。术后24h，兔体温可升至40℃左右。在整个造模过程中，模型动物神态萎靡，不食不饮，腹部胀满，2～4d内陆续。

大动脉转位致紫绀型心脏病动物模型

【造模方法】  体重为1.5～2.0kg雄性新西兰兔，按30mg/kg体重的剂量经耳缘静脉***硫喷妥钠麻l醉，然后每隔30min静脉***3～5mg/kg体重的剂量维持麻l醉。动物行仰卧位固定，前胸部皮肤常规去毛后消毒，作前正中无菌***切口，切开皮肤、皮下***及肌层，于第6、第7肋间水平横断胸骨，延正中线向上剪开胸骨，撑开器撑开，剪开心包，暴露心脏，注意保持纵隔胸膜的完整。游离肺动脉后，用4号丝线双活结结扎左心耳根部以阻断血流，于左心耳内注入1％肝素，用侧壁钳钳夹肺动脉左侧壁，在与左心耳对应部位剪开4～5mm的切口，用8/0的无损伤尼龙缝合线将肺动脉与左心耳侧侧吻合，先连续外翻缝合后壁，再间断外翻缝合前壁。缝线打结前排尽空气，先松开左心耳根部的结扎线，再缓慢松开肺动脉上的侧壁钳。生理盐水冲洗胸腔，置入硅胶引流片，关胸。术后每日肌肉***青l霉l素40万U以预防感l染，共5d，术后3d拔取引流条。***当中观察左心耳的颜色变化。于术后第4周，麻l醉，经腹l股l沟处切口l，l暴露股动脉，抽血测定pH值、氧分压(PO2)、二氧化碳分压(PCO2)、氧饱和度(SaO2)、血红蛋白含量(Hb)、红细胞比容(Hct)。正确地评估动物***模型应该懂得没有一种动物模型能完全人类***真实情况，动物毕竟不是***的缩影。采血后处死动物，观察心脏及吻合情况。术中吻合完成时可见左心耳颜色明显变暗，术后4周处死动物可见双心室轻度扩大，以右心室明显，吻合口通畅，直径为3～4mm，吻合口处光滑。术后1周动物的PO2、SaO2明显降低。术后第4周，PO2和SaO2的降低程度有所减小，考虑是代偿的原因。注意吻合口的大小要严格控制在4～5mm，太大时，严重的低氧会造成动物早期死l亡；太小时，有不能满足实验的要求，且容易形成血l栓而堵塞吻合口。