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戴经理 先生
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公司地址: | 江苏省南京市栖霞区和燕路371号东南大学国家大学科技园科创楼A301 |
发布时间:2022-05-05 02:32:14
细胞实验介绍——慢病毒建立稳转细胞系
慢病毒包装:公司使用3质粒慢病毒包装系统,慢病毒系统使用pLKO.1-EGFP、psPAX2、pMD2.G,过表达慢病毒系统使用pLVX-AcGFP、psPAX2、pMD2.G三质粒系统,将质粒混匀后使用磷酸钙转染方法转染至HEK293T细胞中,培养48h后,收集上清。使用genecopo公司慢病毒颗粒纯化***盒将慢病毒纯化。用200μ的移液枪反复、快速地吹打平皿中的液体,转移至15ml离心管中,于4C1500rpm离心5分钟,倒掉上清,以10ml胰酶重悬沉淀,放在37C水浴中消化30分钟,且每隔五分钟轻轻晃动,使之充分消化。纯化后留取部分检测病毒滴度,其余病毒冻存于-80℃冰箱中。
滴度检测:将病毒颗粒使用梯度稀释,分别293T细胞,72h后,在荧光显微镜下观察细胞荧光表达情况。根据细胞荧光量计算病毒滴度。
细胞:在病毒前一天对细胞进行计数,接种约10000个细胞于12孔板中,培养过夜后使用无培养基稀释病毒,加入12孔板中对细胞进行,病毒数量根据推荐细胞的MOI加入(若无推荐MOI,需做病毒梯度:1,5,10,50,100 5个梯度对细胞),6h后去除含病毒溶液,加入完全培养基细胞培养,培养48h后,在荧光显微镜下观察细胞荧光强度。同时加入puromycin对细胞筛选,筛选约2周时间。3%的上层琼脂,每孔加1ml上层琼脂和100ul单细胞悬液(约1000ell/wel),混匀,室温凝固。细胞筛选好后,使用定量PCR和Western blot检测目的***的稳定表达情况。
实验流程:慢病毒质粒构建-HEK293T细胞培养-质粒转染293T细胞-病毒收集-病毒纯化-病毒滴度检测-细胞-稳转细胞筛选-稳转细胞鉴定
结果示例:
图 A 病毒滴度检测;B 目的细胞病毒效果图
自噬流检测
自噬是调节真核细鹏生长、和能量代谢的重要生物学机制。细胞自噬行使其生物学功能的前提是自噬流的话化。大量证据表明自噬流受损与多种慢性炎性***,特别是、***退行性***及***纤维化的发病密切相关,目前对于自噬液的检别是自噬与其相关***研究领域的热点。处死孕鼠,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开,用另外--组剪刀、镊子剪开腹部肌层,露出,后用第三组剪刀和镊子将小心取出放在盛有D-PBS的玻璃平皿中,冲洗去血。由于自噬流是一个曲多个步骤组成的动态过程。因此往需要精细的突验才能准确判断自啦流状态。
成纤维细胞分离方法
1.处死孕鼠,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开,用另外- -组剪刀、镊子剪开腹部肌层,露出,后用第三组剪刀和镊子将小心取出放在盛有D-PBS的玻璃平皿中,冲洗去血。
2.用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除,然后夹掉头和内脏,将其余胚胎转移到一个装有30 ml D-PBS的50 ml离心管中,轻轻颠倒两次,倒掉D-PBS,再重复此步骤一次,注意要留少许D-PBS,然后将胚胎转移到另- -装有D-PBS的平皿中,并用***刀片将其细细切碎。7%两个浓度的低溶点琼脂糖液,高压灭菌后,维持在40日中不会凝固。
3. 用200 μ的移液反复、快速地吹打平皿中的液体,转移至15 ml离心管中,于4C 1500 rpm离心5分钟,倒掉上清,以10 ml胰酶重悬沉淀,放在37C水浴中消化30分钟,且每隔五分钟轻轻晃动,使之充分消化。
4.将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml MEF生长培养基的50 ml离心管中,用200目的尼龙网过滤后,以1500 rpm离心5分钟收集细胞,再用30 ml MEF生长培养基洗涤两次。
5.细胞沉淀用15 ml MEF生长培养基重悬后进行细胞计数(- -般8只14天的胎鼠可获得2-3x107细胞)。
6. 3x106细胞悬浮于15 ml MEF生长培养基中,接种到200 ml培养瓶中。
7. 24小时后更换新鲜的MEF生长培养基。
8.细胞长满后,先用D-PBS冲洗,倒掉后加胰酶消化(此步时间不宜过长,作者- -般不超过五分钟),按1:5传代。
9. 细胞再次长到覆盖率80-90%左右, 将其消化后,常规冻存(冻存液要现配)。
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